北京专治白癜风医院哪家最好 http://pf.39.net/bdfyy/xwdt/提示：点击上方"中洪博元"↑免费订阅本刊
科研工具丨作图丨实验丨SCI丨统计分析丨国自然
各种基础医学研究中，为了观察药物、新化合物等的药效毒理；在疾病发生的病因、病机、病理研究中，为了观察动物的机体功能、代谢及形态变化，都需要对实验动物采用一定的给药方式。
而大鼠尾静脉注射就是其中最常用的方法之一。
之前我们有介绍过小鼠尾静脉注射（点击查看以往文章：），但大鼠个体更大，难固定、易挣扎；尾巴颜色深，不易辨别血管；尾巴质地更粗糙，扎针力度要更大；因此大鼠尾静脉注射操作难度更大。
想起了前段时间在一个医学类论坛里看到的吐槽：
我练了一个多星期，越打越没感觉！郁闷啊！尾巴上全是针眼，心疼呐！尾巴打久了是不是会很难打，还是技术没有练到家？我感觉进针一定不能太深，斜面进去后再进点点就差不多了，针头固定很重要！还有就是请教各位高手，麻醉后血管充盈状态是不是很差，更不容易打？我要打阿霉素，需要很高的注射技术，不知各位有没有什么诀窍?
大鼠尾静脉注射，可以说是每一位医学生、科研人员所必须熟练掌握的技术方法，也是科研动物实验入门的必备技能。
那大鼠尾静脉注射又该如何操作呢？
一、大鼠固定
将大鼠固定好，将尾巴拉直，绷紧。在进行尾静脉注射时，可使用特殊的固定装置进行固定，如尾静脉注射架或粗的矿泉水瓶。
二、酒精棉球擦拭尾巴，使血管扩张
三、用左手的中指和无名指将大鼠尾巴固定
注射时左手扯尾，使尾巴紧贴中指，中指垫高处为进针部位，一般选择距尾尖1/4或1/3处进针，此处皮肤较薄，血管清晰，进针容易。进针时针头与桌面平行，针尖稍稍朝下一旦进入，须将针头稍稍上挑进入，针头沿血管进入，肉眼可关察到针头前进。如果针头在血管中前进，可明显地感觉到针行通畅，毫无阻力。若针头不在血管中，手感针行有阻力，有一种堵的感觉。进针时不要太深，针头入皮肤后马上把针头略往上，平行进针，针扎入时有落空感，推液时无阻力则说明成功了！如针头处出现皮丘则说明在皮下，推出重来。进针处最好在尾巴的1/3-1/2处，甚至可以更下一点。这样一次失败了还可以往上再来，不要马上在最高处打。
四、通过看有无回血来测试针是否在静脉内
五、缓慢推针注射
六、结束注射时，用酒精棉球挤压伤口十秒钟，以便其伤口愈合
七、注意
1.建议先用蓝墨水练手，因为新手往往看不出打入的是皮下还是静脉。
2.动物越小越好操作，小鼠比大鼠容易，幼年大鼠比成年大鼠容易；对于小鼠最好还是尾静脉注射，这样损伤最小；成年大鼠实在不行可以选股静脉注射，相对要容易一些。
3.针进入后，切记手不可发抖，因为血管壁非常薄，容易扎穿。推药时，要缓推。若进针成功，推药顺畅，无阻力；若推药时感觉有阻力，说明针头不在血管中，须及时拔出，重新进针。一般选用4号或4号半针头。最好用打疫苗的2毫升一次性注射器。
大鼠尾静脉注射视频
中洪动物造模实验服务
一、服务项目
二、服务流程
1.构建模型；2.药效学评价，动物组织及血液标本采集；
3.后续各项指标检测包括：血液生化，组织病理学评价，蛋白、基因相关检测。
三、实验交付：
客户提供：
1、药物或其他实验材料
2、动物模型及方案的选择
3、其他技术要求
我们提供：
1.实验过程图像资料；2.组织、血液样本。3.实验报告（主要仪器及试剂说明，实验步骤，实验结果）
中洪动物造模实验示例
裸鼠成瘤（中洪实拍，盗者必究）
大鼠脑缺血再灌注（中洪实拍，盗者必究）
视网膜缺血再灌注（中洪实拍，盗者必究）
做实验，找中洪博元
--
你可能还想看
?这个动物模型，对糖尿病研究很有用
?胶原诱导关节炎动物模型建立
?19G全套生物实验设计资源，从入门到精通
?中洪博元新大楼曝光，1万余平米实验基地
戳这里，多根头发！预览时标签不可点收录于话题#个上一篇下一篇
转载请注明：http://www.shirenyua.com/tgjj/8550.html
当前位置： 食人鱼 > 食人鱼的习性 > 实验专栏丨尾巴上全是针眼,大鼠尾静脉注射
